Дипломная работа на тему "ТЮМГУ | Активность и кинетические параметры ацетилхолинэстеразы у хлорфенапир-резистентной линии musca domestica l."

Работа на тему: Активность и кинетические параметры ацетилхолинэстеразы у хлорфенапир-резистентной линии musca domestica l.
Оценка: хорошо.
Оригинальность работы на момент публикации 50+% на антиплагиат.ру.
Ниже прилагаю все данные для покупки.
https://studentu24.ru/list/suppliers/Anastasiya1---1326

Описание работы

МИНИСТЕРСТВО НАУКИ И ВЫСШЕГО ОБРАЗОВАНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования
«ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ»

ИНСТИТУТ БИОЛОГИИ
Кафедра анатомии и физиологии человека и животных

Заведующий кафедрой канд. биол. наук, доцент

ВЫПУСКНАЯ КВАЛИФИКАЦИОННАЯ РАБОТА
магистерская диссертация
АКТИВНОСТЬ И КИНЕТИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ АЦЕТИЛХОЛИНЭСТЕРАЗЫ У ХЛОРФЕНАПИР-РЕЗИСТЕНТНОЙ ЛИНИИ MUSCA DOMESTICA L.

06.04.01 Магистерская программа «Биотехнология»

Тюмень 2022

АННОТАЦИЯ
79 с., библ. 126, рис. 13, табл. 7, прилож. 6. [ изъято 2 абзаца]
По материалам выпускной квалификационной работы опубликована статья в журнале, входящем в перечень ВАК и RSCI, а также статья в сборнике материалов конференции.
Ключевые слова: комнатная муха (Musca domestica L.), инсектициды, хлорфенапир, фипронил, резистентность, ацетилхолинэстераза, неспецифические эстеразы.

ANNOTATION
79 pages, literature 126, illustration 13, tables 7, applications 6.
[изъято 2 абзаца]
Based on the materials of the graduate qualification work published the article in the journal, which included in the VAK list and RSCI and in the collection of conference materials.
Keywords: housefly (Musca domestica L.), insecticides, chlorfenapyr, fipronil, resistance, acetylcholinesterase, non-specific esterases.

СОДЕРЖАНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ 6
ВВЕДЕНИЕ 7
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 10
1. ХИМИЧЕСКАЯ БОРЬБА С НАСЕКОМЫМИ 10
2. ОБЩИЕ МЕХАНИЗМЫ УСТОЙЧИВОСТИ К ИНСЕКТИЦИДАМ 16
2.1. МЕТАБОЛИЧЕСКАЯ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ 16
2.1.1. ЭСТЕРАЗЫ 18
2.1.1.1. КАРБОКСИЛЭСТЕРАЗА 19
2.1.1.2. АЦЕТИЛХОЛИНЭСТЕРАЗА 20
2.2. МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ 25
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 31
2.1. ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ 31
2.2. ПОЛУЧЕНИЕ ХЛОРФЕНАПИР-РЕЗИСТЕНТНОЙ ЛИНИИ MUSCA DOMESTICA L. Ошибка! Закладка не определена.
2.3. ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ ИНСЕКТИЦИДОВ НА ИМАГО ЛАБОРАТОРНОЙ И РЕЗИСТЕНТНОЙ ЛИНИИ MUSCA DOMESTICA L.
Ошибка! Закладка не определена.
2.4. ХИМИЧЕСКИЕ РЕАКТИВЫ И ИНСЕКТИЦИДЫ Ошибка! Закладка не определена.
2.5. МЕТОДИКА ГОМОГЕНИЗАЦИИ Ошибка! Закладка не определена.
2.6. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ АКТИВНОСТИ АЦЕТИЛХОЛИНЭСТЕРАЗЫ (ПО ЭЛЛМАНУ) Ошибка! Закладка не определена.
2.7. МЕТОДИКА ОПРЕДЕЛЕНИЯ КИНЕТИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ АЦЕТИЛХОЛИНЭСТЕРАЗЫ Ошибка! Закладка не определена.
2.8. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ ЭСТЕРАЗНОЙ АКТИВНОСТИ Ошибка! Закладка не определена.
2.9. МЕТОДИКА КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЛКА (ПО ЛОУРИ) 31
2.10. СТАТИСТИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ОБРАБОТКИ РЕЗУЛЬТАТОВ 33
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ 35
ВЫВОДЫ 39
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК 41

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
ЦНС – центральная нервная система; ACh – ацетилхолин;
ChEs – холинэстеразы;
АХЭ, AChE – ацетилхолинэстераза;
GPI – гликолфосфатидилинозитоловый якорь; КЭ, CarEs, CarE, CCE – карбоксилэстераза; ГSТ – глутатион-S-трансфераза;
ФОС – фосфорорганические соединения; КМ – карбаматы;
DEF – S.S.S-трибутилфосфоротритиоат;
IRAC – Комитет по контролю резистентности к инсектицидам;
ЛД50, СД50, СК50, LC50 – средняя доза вещества, вызывающая гибель половины членов испытуемой группы;
Лаб – чувствительная линия Musca domestica L.;
СИХ – хлорфенапир-резистентная линия Musca domestica L.

ВВЕДЕНИЕ
Комнатная муха Musca domestica L. относится к отряду двукрылых, семейству Muscidae [Ranian, Zahoor, Zahoor et al., p. 328]. Это высокомобильный космополитичный вид, имеющий важное санитарное значение в медицине [Qiu, Pan, Li et al., p. 202; Farooq, Freed, p. 28; Ranian, Zahoor, Zahoor et al., p. 328] и ветеринарии [Ahmadi, Khajehali, p. 345; You, Shan, Xin et al., p. 2; You, Li, Yin et al., p. 2]. M. domestica является механическим переносчиком примерно 200 патогенов [Li, Huang, Yuan, p. 312; Qu, Zhu, Li et al., p. 2339] человека и животных [Baskurt, Taskin, Dogac et al., p. 249; Ahmadi, Khajehali, p. 345; You, Shan, Ma et al., p. 4322; Riaz, Zahoor, Malik et al., p. 2; Abobakr, Al-Hussein, Bayoumi et al., p. 4] в жилых, коммерческих, животноводческих и птицеводческих помещениях [Ahmadi, Khajehali, p. 345], включая бактериальную дизентерию, холеру, шигеллез, птичий грипп и сальмонеллез [Ranian, Zahoor, Zahoor et al., p. 328], стафилококк, энтерококк, кишечную палочку, брюшной тиф, туберкулёз, офтальмию, сибирскую язву и др. [Riaz, Zahoor, Malik et al., p. 2], в том числе бактерий устойчивых к антибиотикам [Qiu, Pan, Li et al., p. 202].
Комнатная муха – это экономическая проблема для фермерских хозяйств, поскольку животные тратят дополнительную энергию на борьбу с насекомыми [Ranian, Zahoor, Zahoor et al., p. 328], что приводит к снижению производства яиц, молока, снижению конверсии корма [Wang, Li, Pan et al., p. 154; Riaz, Zahoor, Malik et al., p. 2]. Это указывает на необходимость применения инсектицидов в современном сельском хозяйстве для борьбы с вредителями (в том числе и комнатной мухой) [Lang, Shang, Chen et al., p. 1796]. Но часто возникает проблема из-за нерационального использования инсектицидов – развитие резистентности, которая ведет к увеличению доз, частоты применения препаратов [Ahmadi, Khajehali, p. 345].
В настоящее время достигнут прогресс в понимании механизмов резистентности к широко применяемым инсектицидам: пиретроидам, фосфорорганическим, хлорорганическим соединениям, неоникотиноидам, спиносинам, пиразолам [Qayyum, Wakil, Arif et al., p. 287]. Но применение относительно новых и менее распространённых инсектицидов, таких как хлорфенапир, фипронил также вызывает появление устойчивых к ним популяций насекомых-вредителей, однако точный механизм формирования резистентности к ним полностью не установлен, поэтому тема является актуальной.
Кинетические параметры (Km, Vmax) АХЭ у M. domestica изучались в лабораторных условиях в модельных экспериментах путем их определения после воздействия инсектицидов (хлорфенапира, фипронила) на хлорфенапир- селектированную / резистентную (СИХ) линию M. domestica и сравнения результатов с аналогичными параметрами высокочувствительной линии (Лаб). Также были изучены системы детоксикации и молекулярные мишени инсектицидов, в частности ацетилхолинэстераза и неспецифические эстеразы.
Цель работы – изучение активности эстераз и кинетических параметров ацетилхолинэстеразы у линии Musca domestica, резистентной к хлорфенапиру.
В связи с поставленной целью необходимо решить следующие задачи:
1. Определить неспецифическую и специфическую эстеразную активность у имаго чувствительной и хлорфенапир- резистентной линий Musca domestica;
2. Определить кинетические параметры (Km, Vmax) ацетилхолинэстеразы у имаго чувствительной и хлорфенапир-резистентной линий Musca domestica;
3. Изучить влияние хлорфенапира и фипронила в сублетальных дозах на активность неспецифической эстеразы у имаго чувствительной и хлорфенапир- резистентной линий Musca domestica;
4. Изучить влияние хлорфенапира и фипронила в сублетальных дозах на активность и кинетические параметры (Km, Vmax) ацетилхолинэстеразы у имаго чувствительной и хлорфенапир-резистентной линий Musca domestica;
5. Выполнить сравнительный анализ полученных данных в зависимости от пола насекомых и дозы инсектицида.

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
1. Активность неспецифических эстераз и глутатион-S-трансферазы у личинок перелетной саранчи (Locusta migratoria) при развитии грибной инфекции Metarhizium anisopliae (Ascomycota, Hypocreales) / И. М. Дубовский, Н. Д. Слямова, В. Ю. Крюков [и др.] // Зоологический журнал. 2011. Т. 90. № 11. С. 1360-1364.
2. Давлианидзе Т. А., Еремина О. Ю. Санитарно-эпидемиологическое значение и резистентность к инсектицидам комнатных мух Musca domestica (аналитический обзор литературы 2000-2021 гг.) // Вестник защиты растений. 2021. Т. 104. № 2. С. 72-86.
3. Еремина О. Ю. Хлорфенапир – перспективный инсектицид из группы пирролов для борьбы с резистентными синантропными насекомыми // Пест-менеджмент. 2017. № 1 (101). С. 41-49.
4. Зверев А. А., Зефиров Т. Л. Статистические методы в биологии: учебно-методическое пособие. Казань: КФУ. 2013. 42 с.
5. Кулакова А. М., Хренова М. Г., Немухин А. В. Молекулярный механизм реакции гидролиза хромогенного субстрата пара-нитрофенилацетата в активном центре карбоксилэстеразы-1 человека // Биомедицинская химия. 2021. Т. 67. № 3. С. 300-305.
6. Методы определения эффективности инсектицидов, акарицидов, регуляторов развития и репеллентов, используемых в медицинской дезинсекции. Методические указания. МУ 3.5.2.1759-03. Утв. гл. гос. сан. врачом РФ 28.09.2003.
7. Оборудование для борьбы с переносчиками. Прил. 4. / ВОЗ. – Женева, 1975. С. 175-176.
8. Острая токсичность инсектицидной приманки, содержащей хлорфенапир, для белых мышей / М. А. Левченко, Г. Ф. Балабанова, Р. Х.
Бикиняева [и др.] // Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 41. № 3. С. 263-265.
9. Силиванова Е. А., Шумилова П. А., Левченко М. А. Активность ферментов детоксикации у имаго комнатной мухи Musca domestica L. При селекции хлорфенапиром // Биомика. 2020. Т. 12. № 4. С. 492-503.
10. Скрининг новых средств для уничтожения имаго и личинок мух Musca domestica / В. З. Ямов, В. Н. Домацкий, Е. А. Силиванова [и др.] // Пест- менеджмент. 2012. № 3 (83). С. 46-49.
11. Смирнов А. А. Изучение роли ферментативных систем в механизме устойчивости иксодовых клещей к некоторым препаратам // Ветеринарная патология. 2006. № 1 (16). С. 122-124.
12. Соболев Д. Н. Новые методические подходы к определению остаточных количеств инсектицида фипронила и его метаболита фипронил- сульфона в меде // Сборник материалов международной научно-практической конференции «Здоровье и окружающая среда». 2019. С. 356-358.
13. Соколянская М. П., Амирханов Д. В. Пути преодоления резистентности насекомых к инсектицидам // Вестник Башкирского государственного аграрного университета. 2006. № 8. С.7-12.
14. Соколянская М. П., Амирханов Д. В. Эстеразные механизмы формирования резистентности у комнатной мухи (Musca domestica) к инсектицидам разных химических классов // Агрохимия. 2008. № 7. С. 56-61.
15. Соколянская М. П. Токсикологическая и биохимическая характеристика процесса формирования резистентности у комнатной мухи (Musca domestica L.) к современным инсектицидам: Специальность 03.00.09. Энтомология: автореферат дисс. на соиск. уч. ст. кандид. биол. наук.
16. Тихова Г. П. Значение и интерпретация ошибки среднего в клиническом исследовании и эксперименте // Региональная анастезия и лечение острой боли. 2013. Т. 7. № 3. С. 50-53.
17. Abbas N., Shad S.A., Ismail M. Resistance to Conventional and New Insecticides in House Flies (Diptera: Muscidae) From Poultry Facilities in Punjab, Pakistan // Journal of Economic Entomology. 2015. V. 108 (2). P. 826-833.
18. A Comparative Study of Inhibitory Properties of Saponins (derived from Azadirachta indica) for Acetylcholinesterase of Tribolium castaneum and Apis mellifera / A. J. Sami, S. Bilal, M. Khalid [et al.] // Pakistan journal of zoology. 2018. V. 50(2). P. 725-733.
19. A comprehensive review of environmental fate and degradation of fipronil and its toxic metabolites / N. S. Singh, R. Sharma, S. K. Singh [et al.] // Environ Res. 2021. V. 199. № 111316. P. 1-15.
20. Ahmadi E., Khajehali J. Dichlorvos Resistance in the House Fly Populations, Musca domestica, of Iranian Cattle Farms // Journal of arthropod-borne diseases. 2020. V. 14(4). P. 344-352.
21. Ahmed S., Wilkins R. M. Studies on some enzymes involved in insecticide resistance in fenitrothion-resistant and -susceptible strains of Musca domestica L. (Dipt, Muscidae) // Journal of applied entomology. 2002. V. 126(9). P. 510-516.
22. Althalji M., Gorgun S. Purification and characterization of an esterase from larval Diplolepis fructuum (Rubsaamen, 1895) (Hymenoptera: Cynipidae) // Turkiye entomoloji dergisi-turkish journal of entomology. 2019. V. 43(4). P. 367-376.
23. Amino acid substitutions of acetylcholinesterase associated with carbofuran resistance in Chilo suppressalis / C. Chang, X. Cheng, X. Y. Huang [et al.]
// Pest management science. 2014. V. 70(12). P. 1930-1935.
24. An insect acetylcholinesterase biosensor utilizing WO3/g-C3N4 nanocomposite modified pencil graphite electrode for phosmet detection in stored grains / S. Bilal, M. M. Hassan, M. F. U. Rehman [et al.] // Food chemistry. 2021. V. 346. № 128894. P. 1-10.
25. Arora S., Kumar A. Binary combinations of organophosphorus pesticides exhibit differential toxicity under oxidised and un-oxidised conditions // Ecotoxicology and environmental safety. 2015. V. 115. P. 93-100.
26. Bacterial Expression and Kinetic Analysis of Carboxylesterase 001D from Helicoverpa armigera / Y. Li, J. Liu, M. Lu [et al.] // International journal of molecular sciences. 2016. V. 17(4). P. 1-13.
27. Badiou A., Brunet J. L., Belzunces L. P. Existence of two membrane- bound acetylcholinesterases in the honey bee head // Archives of insect biochemistry and physiology. 2007. V. 66(3). P. 122-134.
28. Binary combinations of organophosphorus and synthetic pyrethroids are more potent acetylcholinesterase inhibitors than organophosphorus and carbamate mixtures: An in vitro assessment / S. Arora, S. Balotra, G. Pandey [et al.] // Toxicology letters. 2017. V. 268. P. 8-16.
29. Biochemical characterization of two distinct acetylcholinesterases possessing almost identical catalytic activity in the damselfly Vestalisgracilis / K. Y. Ho, D. Kwon, L. Hyeock [et al.] // Journal of Asia-Pacific Entomology. 2013. V. 16(4). P. 465-471.
30. Biological responses in Musca domestica to chronic fipronil and chlorfenapyr exposures / P. A. Shumilova, E. A. Silivanova, N. A. Sennikova [et al.]
// Regulatory Mechanisms in Biosystems. 2021. V. 12(4). P. 1-10.
31. Bis-isoquinolinium and bis-pyridinium acetylcholinesterase inhibitors: in vitro screening of probes for novel selective insecticides / V. Hrabcova, J. Korabecny, B. Manyova [et al.] // RSC Advances. 2017. V. 7(62). P. 39279-39291.
32. Brown A. M. A step-by-step guide to non-linear regression analysis of experimental data using a Microsoft Excel spreadsheet // Computer Methods and Programs in Biomedicine. 2001. V.65(3). P. 191-200.
33. BusinesStat [Электронный ресурс].
34. Cao Y., Herrero-Nogareda L., Cedergreen N. A comparative study of acetylcholinesterase and general-esterase activity assays using different substrates, in vitro and in vivo exposures and model organisms // Ecotoxicology and Environmental Safety. 2019. № 109954. P. 1-10.
35. Characterization and kinetic study of the brain and muscle acetylcholinesterase from Danio rerio / C. S. Marinho, M. V. F. Matias, I. G. F. Brandao [et al.] // Comparative biochemistry and physiology c-toxicology & pharmacology. 2019. V. 222. P. 11-18.
36. Characterization of acetylcholinesterase from elm left beetle, Xanthogaleruca luteolaand QSAR of temephos derivatives against its activity / M. Sharifi, M. Ghadamyari, K. Gholivand [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2017. V. 136. P. 12-22.
37. Characterization of brain acetylcholinesterase of bentonic fish Hoplostemum littorale: Perspectives of application in pesticides and metal ions biomonitoring / M. C. Araujo, C. R. D. Assis, K. C. C. Silva [et al.] // Aquatic toxicology. 2018. V. 205. P. 213-226.
38. Chlorfenapyr (A Pyrrole Insecticide) Applied Alone or as a Mixture With Alpha-Cypermethrin for Indoor Residual Spraying Against Pyrethroid Resistant Anopheles Gambiae Sl: An Experimental Hut Study in Cove, Benin / N. Corine, C. Ngufor, J. Critchley [et al.] // PLoS One. 2016. V. 11. № 9. P. 1-14.
39. Comparative studies of acetylcholinesterase purified from three field populations of Liposcelis entomophila (Enderlein) (Psocoptera: Liposcelididae) / L.-
S. Xiao, W. Dou, Y. Li [et al.] // Archives of insect biochemistry and physiology. 2010. V. 75(3). P. 158-173.
40. Comparison of inhibition kinetics of several organophosphates, including some nerve agent surrogates, using human erythrocyte and rat and mouse brain acetylcholinesterase / A. Coban, R. L. Carr, H. W. Chambers [et al.] // Toxicology letters. 2016. V. 248. P. 39-45.
41. Design, synthesis and evaluation of novel nonquaternary and 3 non- oxime reactivators for acetylcholinesterase inhibited by organophosphates / H. L. Bi,
Q. Ouyang, Z. Wei [et al.] // Bioorganic chemistry. 2020. V. 100. № 103902. P. 1-12.
42. Detection and geographical distribution of the organophosphate resistance-associated Delta 3Q ace mutation in the olive fruit fly, Bactrocera oleae (Rossi) / E. G. Kakani, E. Sagri, M. Omirou [et al.] // Pest management science. 2014. V. 70(5). P. 743-750.
43. Detection of Chemical Weapon Agents Using Spectroscopic Probes: A Computational Study / L. S. Braga, E. F. Silva, D. T. Mancini [et al.] // Journal of chemistry. 2020. V. 2020. № 1312403. P. 1-10.
44. Differences in larval pesticide tolerance and esterase activity across honey bee (Apis mellifera) stocks / J. P. Milone, F. D. Rinkevich, A. McAfee [et al.]
// Ecotoxicology and environmental safety. 2020. V. 206. P. 1-10.
45. Different response of acetylcholinesterases in salt- and detergent-soluble fractions of honeybee haemolymph, head and thorax after exposure to diazinon / G. Glavan, M. Kos, J. Bozic [et al.] // Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology & Pharmacology. 2018. V. 205. P. 8-14.
46. Diversity and frequencies of genetic mutations involved in insecticide resistance in field populations of the house fly (Musca domestica L.) from China / Q.
M. Wang, M. Li, J. Pan [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2012. Volume 102(2). P. 153-159.
47. Drug-1,3,4-Thiadiazole Conjugates as Novel Mixed-Type Inhibitors of Acetylcholinesterase: Synthesis, Molecular Docking, Pharmacokinetics, and ADMET Evaluation / R. Ujan, A. Saeed, P. A. Channar [et al.] // Molecules. 2019. V. 24(5). № 860. P. 1-10.
48. Esterase-mediated spinosad resistance in house flies Musca domestica (Diptera: Muscidae) / Y. Zhang, M. Guo, Z. Ma [et al.] // Ecotoxicology. 2020. V. 29(1). P. 35-44.
49. Evaluation of a Brain Acetylcholinesterase Extraction Method and Kinetic Constants after Methyl-Paraoxon Inhibition in Three Brazilian Fish Species /
A. P. Freitas, C. R. Santos, P. N. Sarcinelli [et al.] // PLoS One. 2016. V. 11(9). № e0163317. P. 1-10.
50. Evaluation of Resistance to Some Pyrethroid and Organophosphate Insecticides and Their Underlying Impact on the Activity of Esterases and Phosphatases in House Fly, Musca domestica (Diptera: Muscidae) / K. Ranian, M. K. Zahoor, M. A. Zahoor [et al.] // Polish journal of environmental studies. 2021. V. 30(1). P. 327-336.
51. Evaluation of the pyrrole insecticide chlorfenapyr against pyrethroid resistant and susceptible Anopheles funestus (Diptera: Culicidae) / S. V. Oliver, M. L. Kaiser, O. R. Wood [et al.] // Wiley Online Library. 2010. V. 15. № 1. P. 127-131.
52. Experimental Hut Evaluation of the Pyrrole Insecticide Chlorfenapyr on Bed Nets for the Control of Anopheles Arabiensis and Culex Quinquefasciatus / F. W. Mosha, I. N. Lyimo, R. M. Oxborough [et al.] // Wiley Online Library. 2008. V. 13(5). P. 644-652.
53. Expression of the housefly acetylcholinesterase in a bioreactor and its potential application in the detection of pesticide residues / G.-J. Lang, J.-Y. Shang, Y.-X. Chen [et al.] // World journal of microbiology & biotechnology. 2010. V. 26(10). P. 1795-1801.
54. Farooq M., Freed S. Mortality, Biological, and Biochemical Response of Musca domestica (Diptera: Muscidae) to Selected Insecticides // Journal of entomological science. 2018. V. 53(1). P. 27-45.
55. Feng X., Li M., Liu N. Carboxylesterase genes in pyrethroid resistant house flies, Musca domestica // Insect Biochemistry and Molecular Biology. 2018. V. 92. P. 30-39.
56. Feng X., Liu N. Functional Analyses of House Fly Carboxylesterases Involved in Insecticide Resistance // Frontiers in physiology. 2020. V. 11. Р. 1-11.
57. First principles calculations of thermodynamics and kinetic parameters and molecular dynamics simulations of acetylcholinesterase reactivators: can mouse data provide new insights into humans? / K. S. Matos, E. F. F. da Cunha, A. D. Goncalves [et al.] // Journal of biomolecular structure & dynamics. 2012. V. 30(5). P. 546-558.
58. Foil L. D., Guerrero F. D., Bendele K. G. Detection of Target Site Resistance to Pyrethroids and Organophosphates in the Horn Fly Using Multiplex Polymerase Chain Reaction // Journal of medical entomology. 2010. V. 47(5). P. 855- 861.
59. Frequency of Pyrethroid Insecticide Resistance kdr Gene and Its Associated Enzyme Modulation in Housefly, Musca domestica L. Populations From Jhang, Pakistan / B. Riaz, M. K. Zahoor, K. Malik [et al.] // Frontiers in environmental science. 2022. V. 9. № 806456. P. 1-15.
60. Functional analysis and molecular characterization of two acetylcholinesterases from the German cockroach, Blattella germanica / Y. H. Kim, J.
Y. Choi, Y. H. Je [et al.] // Insect molecular biology. 2010. V. 19(6). P. 765-776.
61. Functional and immunohistochemical characterization of CCEae3a, a carboxylesterase associated with temephos resistance in the major arbovirus vectors Aedes aegypti and Ae. albopictus / L. Grigoraki, V. Balabanidou, C. Meristoudis [et al.] // Insect biochemistry and molecular biology. 2016. V. 74. P. 61-67.
62. Functional characterization of carboxylesterase gene mutations involved in Aphis gossypii resistance to organophosphate insecticides / Y. Gong, G. Ai, M. Li [et al.] // Insect molecular biology. 2017. V. 26(6). P. 702-714.
63. Fundacao O. C. Quantification methodology for enzyme activity related to insecticide resistance in Aedes aegypti // Ministry of Health of Brazil. Brasilia: Ministerio da Saude. 2006. 128 p.
64. Genomic structure, organization and localization of the acetylcholinesterase locus of the olive fruit fly, Bactrocera oleae / E. G. Kakani, M.
Trakala, E. Drosopoulou [et al.] // Bulletin of entomological research. 2013. V. 103(1). P. 36-47.
65. Harmful effects of fipronil exposure on the behavior and brain of the stingless bee Partamona helleri Friese (Hymenoptera: Meliponini) / C. F. Farder- Gomes, K. M. Fernandes, R. C. Bernardes [et al.] // Sci Total Environ. 2021. P. 1-10.
66. Identification and characterization of mutations in housefly (Musca domestica) acetylcholinesterase involved in insecticide resistance / S. B. Walsh, T. A. Dolden, G. D. Moores [et al.] // Biochemical journal. 2001. V. 359. Pt. 1. P. 175-181.
67. Identification of carboxylesterase genes implicated in temephos resistance in the dengue vector Aedes aegypti / R. Poupardin, W. Srisukontarat, C. Yunta [et al.] // PLoS Negl Trop Dis. 2014. V. 8(3). P. 1-11.
68. Impact of 2,4-D and fipronil on the tropical midge Chironomus sancticaroli (Diptera: Chironomidae) / T. J. D. S. Pinto, R. A. Moreira, L. C. M. D. Silva [et al.] // Ecotoxicol Environ Saf. 2021. V. 209. № 111778. P. 1-10.
69. Inheritance mode and mechanisms of resistance to imidacloprid in the house fly Musca domestica (Diptera:Muscidae) from China / Z. Ma, J. Li, Y. Zhang [et al.] // PLoS One. 2017. V. 12(12). № e0189343. P. 1-10.
70. Inhibition Kinetics of 16 Organophosphorus Pesticides or Their Active Metabolites on Erythrocyte Acetylcholinesterase From Humans and Rats / E. C. Meek,
R. Reiss, J. A. Crow [et al.] // Toxicological sciences. 2021. V. 183(2). P. 404-414.
71. Inhibitory activities of flavonoids from Eupatorium adenophorum against acetylcholinesterase / M. Y. Li, X. Gao, M. X. Lan [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2020. V. 170. № 104701. P. 1-10.
72. Insecticides, biologics and nematicides: Updates to IRAC's mode of action classification – a tool for resistance management / T. C. Sparks, A. J. Crossthwaite, R. Nauen [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2020. V. 167. P. 1-10.
73. In silico approaches to evaluate the molecular properties of organophosphate compounds to inhibit acetylcholinesterase activity in housefly / P.
Marimuthu, Y.-J. Lee, B. Kim [et al.] // Journal of biomolecular structure & dynamics. 2019. V. 37(2). P. 307-320.
74. Isik M. High Stability of Immobilized Acetylcholinesterase on Chitosan Beads // Chemistryselect. 2020. V. 5(15). P. 4623-4627.
75. Khan H. A. A., Akram W., Ali S. Activities of Select Enzymes Involved in Insecticide Resistance in Spinosad-Resistant and -Susceptible Strains of Musca domestica (Diptera: Muscidae) // Journal of Medical Entomology. 2019. V. 57(2) P. 620-622.
76. Khan H. A. A., Akram W. Cyromazine resistance in a field strain of house flies, Musca domestica L.: Resistance risk assessment and bio-chemical mechanism // Chemosphere. 2017. V. 167. P. 308-313.
77. Kim Y. H., Lee S. H. Which acetylcholinesterase functions as the main catalytic enzyme in the Class Insecta? // Insect biochemistry and molecular biology. 2013. V. 43(1). P. 47-53.
78. Kinetic analysis of acetylcholinesterase in a propoxur-resistant strain of housefly (Musca domestica) from Shanghai, China / M. A. Shi, J. Z. Yuan, J. Wu [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2002. V. 72(2). P. 72-82.
79. Klichkhanov N. K., Dzhafarova A. M., Al-Rabeei M. A. M. Kinetic Characteristics of Acetylcholinesterase and Structural-Functional State of the Rat Erythrocyte Membranes at Moderate Hypothermia // Biologicheskiemembrany. 2017. V. 34(3). P. 201-214.
80. Lang G. J., Zhu K. Y., Zhang C. X. Can Acetylcholinesterase Serve as a Target for Developing More Selective Insecticides? // Current drug targets. 2012. V. 13(4). P. 495-501.
81. Lee S.-N., Kim J. H., Lee S.-B. Internal Diffusion-Controlled Enzyme Reaction: The Acetylcholinesterase Kinetics // Journal of chemical theory and computation. 2012. V. 8(2). P. 715-723.
82. Linkage analysis of an acetylcholinesterase gene in the house fly Musca domestica (Diptera :Muscidae) / T. Kozaki, T. Shono, T. Tomita [et al.] // Journal of economic entomology. 2002. V. 95(1). P. 129-133.
83. Li Q., Huang J., Yuan J. Status and preliminary mechanism of resistance to insecticides in a field strain of housefly (Musca domestica, L) // Revista Brasileira de Entomologia. 2018. V. 62(4). P. 311-314.
84. Marasovic M., Marasovic T., Milos M. Robust Nonlinear Regression in Enzyme Kinetic Parameters Estimation // Journal of Chemistry. V. 2017. ID 6560983. P. 1-12.
85. Mixed-function oxidases and esterases associated with cross-resistance between DDT and lambda-cyhalothrin in Anopheles darlingi Root 1926 populations from Colombia / I. Fonseca-Gonzalez, M. L. Quinones, J. McAllister [et al.] // Memorias do instituto Oswaldo Cruz. 2009. V. 104(1). P. 18-26.
86. Molecular and Kinetic Properties of Two Acetylcholinesterases from the Western Honey Bee, Apis mellifera / Y. H. Kim, D. J. Cha, J. W. Jung [et al.] // PLoS One. 2012. V. 7(11). № 48838. P. 1-10.
87. Molecular docking and in vitro evaluation of a new hybrid molecule (JM- 20) on cholinesterase activity from different sources / F. D. da Silva, P. A. Nogara, E. Ochoa-Rodriguez [et al.] // Biochimie. 2020. V. 168. P. 297-306.
88. Molecular modeling and in vitro reactivation study between the oxime BI-6 and acetylcholinesterase inhibited by different nerve agents / J. O. S. Giacoppo,
T. C. C. Franca, K. Kuca [et al.] // Journal of biomolecular structure & dynamics. 2015. V. 33(9). P. 2048-2058.
89. Molecular polymorphism of head acetylcholinesterase from adult houseflies (Musca domestica L) / D. Fournier, A. Cuany, J. M. Bride [et al.] // Journal of neurochemistry. 1987. V. 49(5). P. 1455-1461.
90. Mosquitocidal carbamates with low toxicity to agricultural pests: an advantageous property for insecticide resistance management / D. R. Swale, P. R. Carlier, J. A. Hartsel [et al.] // Pest management science. 2015. V. 71(8). P. 1158-1164.
91. Multiple Genetic Mutations Related to Insecticide Resistance are Detected in Field Kazakhstani House Flies (Muscidae: Diptera) / R.-N. Qu, J. Zhu, M. Li [et al.] // Journal of medical entomology. 2021. V. 58(6). P. 2338-2348.
92. Multiple Resistances Against Formulated Organophosphates, Pyrethroids, and Newer-Chemistry Insecticides in Populations of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) from Pakistan / M. A. Qayyum, W. Wakil, M. J. Arif [et al.] // Journal of Economic Entomology. 2015 V.108 (1). P. 286-293.
93. Mutations in acetylcholinesterase genes of Rhopalosiphumpadi resistant to organophosphate and carbamate insecticides / M.-H. Chen, Z.-J. Han, X.-F. Qiao [et al.] // Genome. 2007. V. 50(2). P. 172-179.
94. New Nanospheres to Use in the Determination of ImidanPhosmet and Vantex Pesticides / E. Karmaz, E. H. Ozkan, N. K. Yetim [et al.] // Journal of inorganic and organometallic polymers and materials. 2021. V. 31(7). P. 2915-2924.
95. Oral Delivery Mediated RNA Interference of a Carboxylesterase Gene Results in Reduced Resistance to Organophosphorus Insecticides in the Cotton Aphid, Aphis gossypii Glover / Y.-H. Gong, X.-R. Yu, Q.-L. Shang [et al.] // PLoS One. 2014. V. 9(8). Р. 1-9.
96. Organophosphate and pyrethroid hydrolase activities of mutant Esterases from the cotton bollworm Helicoverpa armigera / Y. Li, C. A. Farnsworth, C. W. Coppin [et al.] // PLoS One. 2013. V. 8(10). P. 1-7.
97. Organophosphate Insecticides Resistance in Field Populations of House Flies, Musca domestica L.: Levels of Resistance and Acetylcholinesterase Activity /
Y. Abobakr, F. I. Al-Hussein, A. E. Bayoumi [et al.] // Insects. 2022. V. 13(2). № 192. P. 1-10
98. PCR-RFLP methods for detection of insecticide resistance-associated mutations in the housefly (Musca domestica) / X-H. Qiu, J. Pan, M. Li [et al.] // Pesticide biochemistry and physiology. 2012. V. 104(3). P. 201-205.
99. Pharmacogenetic Regulation of Acetylcholinesterase Activity in Drosophila Reveals the Regulatory Mechanisms of AChE Inhibitors in Synaptic
Plasticity / W. Kim, D. Lee, J. Choi [et al.] // Neurochemical research. 2011. V. 36(5). P. 879-893.
100. Polymorphism in the acetylcholinesterase gene of Musca domestica L. field populations in Turkey / S. Baskurt, B. G. Taskin, E. Dogac [et al.] // Journal of vector ecology. 2011. V. 36(2). P. 248-257.
101. Prediction of dose-dependent in vivo acetylcholinesterase inhibition by profenofos in rats and humans using physiologically based kinetic (PBK) modeling- facilitated reverse dosimetry / I. Omwenga, S. S. Zhao, L. Kanja [et al.] // Archives of toxicology. 2021. V. 95(4). P. 1287-1301.
102. Propoxur resistance associated with insensitivity of acetylcholinesterase (AChE) in the housefly, Musca domestica (Diptera: Muscidae) / C. M. You, C. Shan,
J. J. Xin [et al.] // Scientific reports. 2020. V. 10(1). № 8400. P. 1-7.
103. Protein measurement with Folin phenol reagent / O. H. Lowry, N. J. Rosebrough, A. L. Farr [et al.] // Journal of Biological Chemistry. 1951. V. 193(1). P. 265-275.
104. Purification and characterization of acetylcholinesterase from oriental fruit fly [Bactrocera dorsalis (Hendel)] (Diptera: Tephritidae) / Y. M. Hsiao, J. Y. Lai,
H. Y. Liao [et al.] // Journal of agricultural and food chemistry. 2004. V. 52(17). P. 5340-5346.
105. Purification and characterization of acetylcholinesterase in Rhynchophorus ferrugineus (Olivier) (Coleoptera: Curculionidae) / M. A. Mohamed,
S. Shaalan, A.-E. M. Ghazy [et al.] // International journal of biological macromolecules. 2020. V. 147. P. 1029-1040.
106. Quantitative and qualitative changes of the carboxylesterase associated with beta-cypermethrin resistance in the housefly, Musca domestica (Diptera: Muscidae) / L. Zhang, J. Shi, X. Shi [et al.] // Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. 2010. V. 156(1). P. 6-11.
107. Resistance to Fipronil in the Common Bed Bug (Hemiptera: Cimicidae) /
M. A. Gonzalez-Morales, Z. deVries, A. Sierras [et al.] // J Med Entomol. 2021. V. 58(4). P. 798-1807.
108. Rosenberry T. L. Strategies to Resolve the Catalytic Mechanism of Acetylcholinesterase // Journal of molecular neuroscience. 2010. V. 40(1-2). P. 32-39.
109. Selection and reversion of azamethiphos-resistance in a field population of the housefly Musca domestica (Diptera :Muscidae), and the underlying biochemical mechanisms / M. Kristensen, M. Knorr, A. G. Spencer [et al.] // Journal of economic entomology. 2000. V. 93(6). P. 1788-1795.
110. Serebrov V. V., Bakhvalov S. A., Glupov V. V. Induction of esterases in larvae of gypsy moth (Lymantria dispar L.) during infection by fungus metarhizium anisopliae (Metsch.) SOR // Euroasian entomological journal. 2005. V. 4(1). P. 9-11.
111. Soluble esterases as biomarkers of neurotoxic compounds in the widespread serpulidFicopomatusenigmaticus (Fauvel, 1923) / V. Casu, F. Tardelli, L. de Marchi [et al.] // Journal of environmental science and health part B-pesticides food contaminants and agricultural wastes. 2019. V. 54(11). P. 883-891.
112. Stojan J. Conformational rigidity of cholinesterases allows for the prediction of combined effects in a particular double mutant // Chemico-biological interactions. 2016. V. 259(SI). Part B. P. 110-114.
113. Susceptibility of Anopheles gambiae from Cote d'Ivoire to insecticides used on insecticide-treated nets: evaluating the additional entomological impact of piperonyl butoxide and chlorfenapyr / B. L. Kouassi, E. Constant, E. Tia [et al.] // Malaria journal. 2020. T. 19. V. 1. № 454. P. 1-11.
114. Taskin V., Kence M. The genetic basis of malathion resistance in housefly (Musca domestica L.) strains from Turkey // Russian journal of genetics. 2004. V. 40(11). P. 1215-1222.
115. Temeyer K. B., Chen A. C. Identification and characterization of a cDNA encoding the acetylcholinesterase of Haematobia irritans (L.) (Diptera: Muscidae) // DNA sequence. 2007. V. 18(2). P. 85-91.
116. The activity of detoxifying enzymes in the infective juveniles of Heterorhabditis bacteriophora strains: Purification and characterization of two acetylcholinesterases / M. A. Mohamed, E. M. E. Mahdy, A. M. Ghazy [et al.] // Comparative biochemistry and physiology c-toxicology & pharmacology. 2016. V. 180. P. 11-22.
117. The Activity of the Pyrrole Insecticide Chlorfenapyr in Mosquito Bioassay: Towards a More Rational Testing and Screening of Non-Neurotoxic Insecticides for Malaria Vector Control / R. M. Oxboroug, R. N'Guessan, R. Jones, [et al.] // Part of Springer Nature. 2015. V. 14. № 124. P. 1-11.
118. The overexpression and variant of CYP6G4 associated with propoxur resistance in the housefly, Musca domestica L. / C. M. You, C. Shan, Z. Ma [et al.] // Pest management science. 2021.V. 77(10). P. 4321-4330.
119. Thiamethoxam Resistance in the House Fly, Musca domestica L.: Current Status, Resistance Selection, Cross-Resistance Potential and Possible Biochemical Mechanisms / H. A. A. Khan, W. Akram, J. Iqbal [et al.] // PLoS One. 2015. V. 10(5). P. 1-9.
120. Time-course of human cholinesterases-catalyzed competing substrate kinetics / A. R. Mukhametgalieva, A. R. Aglyamova, S. V. Lushchekina [et al.] // Chemico-biological interactions. 2019. V. 310. № 108702. P. 1-10.
121. Time of Day-Specific Changes in Metabolic Detoxification and Insecticide Tolerance in the House Fly, Musca domestica L. / C. M. You, Z. L. Li, Y.
Z. Yin [et al.] // Frontiers in physiology. 2022. V. 12. № 803682. P. 1-7.
122. Toxicokinetic analysis of commonly used pesticides using data on acute poisoning cases from Hyderabad, South India / S. N. Sinha, K. R. Kumar, R. Ungarala [et al.] // Chemosphere. 2021. V. 268. № 129488. P. 1-10.
123. Transcriptome Profiling and Genetic Study Reveal Amplified Carboxylesterase Genes Implicated in Temephos Resistance, in the Asian Tiger Mosquito Aedes albopictus / L. Grigoraki, J. Lagnel, I. Kioulos [et al.] // PLoS Negl Trop Dis. 2015. V. 9(5). P. 1-17.
124. Weetman D., Djogbenou L. S., Lucas E. Copy number variation (CNV) and insecticide resistance in mosquitoes: evolving knowledge or an evolving problem?
// Current Opinion in Insect Science. 2018. V. 27. P. 82-88.
125. Xie R.-L., Mei X.-D., Ning J. Design, Synthesis and Insecticide Activity of Novel Acetylcholinesterase Inhibitors: Triazolinone and Phthalimide Heterodimers
// Chemical & pharmaceutical bulletin. 2019. V. 67(4). P. 345-350.
126. Zhang L., Gao X., Liang P. Beta-cypermethrin resistance associated with high carboxylesterase activities in a strain of house fly, Musca domestica (Diptera: Muscidae) // Pesticide Biochemistry and Physiology. 2007. V. 89(1). P. 65-72.